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    DB22T 3111-2020 猫杯状病毒检测 实时荧光RT-PCR法
    猫杯状病毒实时荧光RT-PCR检测方法诊断兽医
    13 浏览2025-06-03 更新pdf0.36MB 未评分
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  • 资源简介

    摘要:本文件规定了猫杯状病毒检测的实时荧光RT-PCR法的技术要求、操作步骤、结果判定和注意事项。本文件适用于猫杯状病毒的实验室检测与诊断。
    Title:Detection of Feline Calicivirus - Real-time Fluorescent RT-PCR Method
    中国标准分类号:B46
    国际标准分类号:11.120

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    DB22T 3111-2020 猫杯状病毒检测 实时荧光RT-PCR法
  • 拓展解读

    DB22/T 3111-2020《猫杯状病毒检测 实时荧光RT-PCR法》是一项针对猫杯状病毒(FCV)检测的吉林省地方标准。该标准适用于临床样本中猫杯状病毒的快速检测,以下是对标准中一些关键条款的详细解读。

    5.1 样品采集与保存

    样品应采用无菌采样工具从疑似感染动物的口腔、鼻腔或粪便中采集。样品应在4℃条件下保存不超过72小时,或在-80℃长期保存。这一规定确保了样品的新鲜度和完整性,避免因储存不当导致病毒失活影响检测结果。

    6.2 RT-PCR反应体系配制

    反应体系包含逆转录酶、引物、探针、反转录酶缓冲液等成分。其中引物和探针的设计至关重要,它们决定了检测的特异性和灵敏度。引物长度一般为18-25个碱基,GC含量控制在40%-60%之间。探针则需与目标序列完全匹配,并保持良好的荧光淬灭特性。

    7.3 扩增条件

    扩增程序包括逆转录步骤和PCR扩增步骤。逆转录温度通常设置为42℃持续30分钟,随后进行预变性95℃ 10分钟,之后进入循环扩增阶段:95℃ 15秒,60℃ 1分钟,共40个循环。合理的扩增条件能够有效提高检测效率,同时减少非特异性扩增的可能性。

    8 结果分析

    Ct值小于设定阈值判定为阳性,大于阈值且信号稳定则为阴性。若Ct值介于两者之间需重复实验确认。此外还需设置阳性对照和阴性对照以验证实验的有效性。结果判断时要综合考虑内参基因的表达情况,确保数据可靠性。

    10 质量控制

    实验室需定期对仪器设备进行校准维护,同时建立完善的质控体系。建议每批次检测都加入阳性质控品和阴性质控品,监测整个检测流程的稳定性。对于新批次试剂盒投入使用前也应进行性能验证,保证其符合标准要求。

    以上是对DB22/T 3111-2020中几个核心部分的深入解析,希望对你理解和应用这项标准有所帮助。

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